一种基于液滴微流控的高通量单细菌细胞RNA测序法介绍

单细胞rna测序(scrna-seq)方法自2005年创立以来,已广泛应用于真核生物领域。目前流行的基于液滴的scrna-seq系统(如10× genomics chromium平台)的关键策略是利用液滴微流控技术将单细胞与唯一的dna条形编码珠子共同封装在液滴中,随后由珠子上数十亿份唯一的条形编码poly(t)引物捕获多聚腺苷酸化的mrna。
然而,这种策略与细菌的单细胞rna测序并不兼容。其中一个主要原因是细菌mrna缺乏3′端poly(a)尾部,而这正是poly(t)引物的捕获位点。此外,典型细菌的rna含量比典型哺乳动物细胞低两个数量级,核糖体rna(rrna)占细菌总rna的80%以上,这使得在单个细菌细胞水平上有效捕获和区分这些低含量mrna变得十分困难,坚韧的细胞壁也使细菌难以裂解并释放液滴中的rna。
为了解决这些问题,人们开发了一些相对低通量的单细菌rna测序方法,这些方法需要使用单细胞操纵器或荧光激活细胞分选术(facs)将单细菌分离到多孔板中。之前开发的两种细菌rna测序方法“petri-seq”和 “microsplit”使用随机反转录(rt)引物,使研究人员能够通过分割池条形码策略同时分析数千个固定细菌,这极大地增强了大规模研究细菌群落转录组异质性的能力。然而,这种组合式分裂池条形码策略需要在96孔板中进行多次反应,而96孔板并不是高通量单细胞rna测序的常用或灵敏平台。此外,即使富集了mrna,petri-seq和microsplit中的大部分映射读数也是rrna,这导致了相当高的测序成本。
为了解决上述问题,近期,浙江大学王永成研究员课题组在nature communications杂志上发表了题为“droplet-based high-throughput single microbe rna sequencing by smrandom-seq”的研究论文,报告了一种基于液滴的高通量单细菌rna测序方法“smrandom-seq”。
在这项工作中,研究人员利用随机引物原位生成互补dna(cdna),利用液滴微流控技术进行单细菌条形码编码,并利用基于crispr的rrna去除法进行mrna富集,在此基础上开发了一种高通量、高灵敏度的单细菌rna测序方法“smrandom-seq”。
图1 基于液滴微流控的smrandom-seq测序方法
smrandom-seq具有条形码效率高、物种特异性高(99%)、交叉污染小(1.6%)和自动化能力强等特点。基于crispr的rrna去除法显著降低了rrna百分比(83%-32%)。由于高效的rrna去除法,大肠杆菌的映射mrna读数高度富集,增加了4倍(16%-63%)。在约8000个大肠杆菌群体中,每个细菌可检测到约1000个基因。研究人员还验证了smrandom-seq可用于其他常见细菌物种,包括革兰氏阴性菌(鲍曼不动杆菌、肺炎双球菌和铜绿假单胞菌)和革兰氏阳性菌(枯草杆菌和金黄色葡萄球菌)。
图2 使用参考细菌样本验证smrandom-seq测序方法的可行性
研究人员还发现大肠杆菌群在抗生素作用下表现出形态异质性,并进行 smrandom-seq以研究单个细菌的这些转录组变化,smrandom-seq对基因表达的聚类分析结果与形态特征一致。大肠杆菌的一些亚群显示出不同的sos响应和代谢通路基因表达模式,这可能是抗生素耐药亚群。
图3 利用smrandom-seq测序方法捕获单个大肠杆菌在抗生素胁迫下的转录组变化
总之,“smrandom-seq”测序方法提供了一种高通量单细菌转录组图谱分析工具,它将促进未来在细菌耐药性、持久性、细菌-宿主相互作用和微生物组研究方面的发现。


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